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琼脂糖凝胶电泳检测pcr结果时胶面比较花看不清楚条带是怎么回事
那要看你的目的基因具体的来源，大小级别的特性。TAE和别的缓冲液什么的，也有些影响，还有就是胶浓度，跑胶时候的电压控制什么的。
这说明你的引物设计不好，导致引物二聚体的产生，同时，引物又不够特异。所以最根本的解决办法就是重新设计引物。或者你也可以做热启动PCR同时提高下退火温度缩短退火时间，这些都可以帮助去除非特异和引物二聚体。
如果检测胶可以看到条带，回收胶看不到的话，可能是你PCR的产物的量太少了，回收胶胶孔宽，PCR结果不好的条带可能就看不到了。
琼脂糖凝胶电泳染料加多了
1、loading buffer成分有甘油或者蔗糖，将样的密度加大，只有加大密度才能在你点样的时候，使得你的样品比TAE的密度大，从而样品沉降在点样孔里面。goldview核酸染料作用是将DNA染色，跑完胶能看清楚。两者作用不同。所有都要用。
2、一般的核酸检测只需要琼脂糖凝胶电泳就可以；如果需要分辨率高的电泳，特别是只有几个bp的差别应该选择聚丙烯酰胺凝胶电泳；用普通电泳不合适的巨大DNA链应该使用脉冲凝胶电泳。
3、百分之一。核酸染料在配置琼脂糖凝胶时融化至60℃时加入，是百分之一，比如称0.15克琼脂糖，加15毫升TAE，多一点。加入2ul的核酸染料。琼脂糖凝胶是以琼脂糖为支持介质制备的凝胶。
4、电泳时核酸染料加多了会影响观察。核酸是无色的，需在电泳30分钟后将凝胶放入核酸染液中染色5分钟，用清水稍微漂洗后在紫外透射检测仪上观察核酸电泳结果。核酸染料加多会导致电泳时团成一团，分不出条带。
5、那 当然 。实验 嘛 ，就是 要求 个 准确 精确 。料液浓淡，通电时间，电流强度，温度...气压 ...都会有影响的。
小鼠活体荧光成像
活体荧光成像一般有三种标记方法：荧光蛋白标记、荧光染料标记以及量子点标记。荧光蛋白适用于标记肿瘤细胞、病毒、基因等。通常使用GFP/EGFP/RFP等。荧光染料常用Cy3，Cy5以及Cy7。可以标记抗体、多肽、小分子药物。
在拥有激发光多光谱分析功能的活体成像系统出现以前，科学家们被迫采取各种方法来减少动物自发荧光，比如：采用无荧光素鼠粮饲养小鼠、使用裸鼠等。
小动物活体荧光成像的组织放置的时间取决于多种因素，例如荧光探针和小动物品种等。一般来说，该技术允许研究人员对小鼠等小动物进行荧光活体成像研究约为1个小时，但是有时这种活体成像甚至可以持续几天。
DNA电泳条带有点花,怎么回事
主要和你提取的DNA样品有关，样品纯度不好或是保存不适宜发生降解都会造成条带不清晰。
感觉是你样品处理的不好，另外你说没有压成一条直线，应该是你的浓缩胶有问题，是不是浓缩胶加的太少了。本身TritonX-100就是一种非离子变性剂，提取完后最好得透析除去TritonX-100。
原因有几点 最大可能是因为凝胶浓度不均匀造成电压不均匀引起的。请认真清洗电泳版和金属线，并多练习制几次胶。也可能是因为电压过高导致凝胶发热变形。可以上冰浴或者降低电压。
那要看你的目的基因具体的来源，大小级别的特性。TAE和别的缓冲液什么的，也有些影响，还有就是胶浓度，跑胶时候的电压控制什么的。
主带显著的情况下，很可能是引物聚合体。如果没有出现显著的你想要的主带，则是非特异扩增产物。第一种情况没事不用理会，第二种情况需要筛查模版中与引物的非特异性互补区，重新设计引物，或者升高退火温度试试。
dna浓度太高，导致跑起来有拖带；含有蛋白等杂志，导致拖带。当然可能还要其他未知原因。
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